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        細胞生物學平臺

        細胞增殖能力檢測

        細胞增殖是生物體的重要生命特征,細胞以分裂的方式進行增殖。單細胞生物,以細胞分裂的方式產生新的個體。多細胞生物,以細胞分裂的方式產生新的細胞,用來補充體內衰老或死亡的細胞。細胞實驗中原代細胞和腫瘤細胞株均有增殖能力,為檢測研究的藥物或者基因的變化對細胞的增殖的影響,一般會使用MTT檢測、CCK8檢測、BrdU染色、EdU染色等實驗。
        1 MTT檢測
        MTT 是一種檢測細胞存活和生長的方法。其檢測原理為活細胞線粒體中的琥珀酸脫氫酶能使外源性 MTT 還原為水不溶性的藍紫色結晶甲瓚(Formazan)并沉積在細胞中,而死細胞無此功能。二甲基亞砜(DMSO)能溶解細胞中的甲瓚,用酶聯免疫檢測儀在 570nm 波長處測定其光吸收值,可間接反映活細胞數量。適合貼壁細胞,不適合懸浮細胞檢測。
        實驗流程:
        1.1、使用血球計數板對細胞計數計數,接種3000-5000個細胞至96孔板,輕輕搖晃均勻后放入培養箱培養過夜;
        1.2、根據實驗目的進行加藥或其他處理;
        1.3、細胞培養到指定時間點后,加入10&mu;l MTT溶液,輕輕混勻后放入培養箱中培養3h;
        1.4、去除培養基,加入DMSO溶液,輕輕搖晃將96孔板放入酶標儀檢測。
        2 CCK8檢測
        Cell Counting Kit-8(簡稱CCK-8)是一種基于WST-8的廣泛應用于細胞增殖和細胞毒性的檢測試劑。WST-8【化學名:2-(2-甲氧基-4-硝基苯基)-3-(4-硝基苯基)-5-(2,4-二磺酸苯)-2H-四唑單鈉鹽】,是一種類似于MTT的化合物,它在電子載體1-甲氧基-5-甲基吩嗪鎓硫酸二甲酯(1-Methoxy PMS)存在的情況下,被線粒體中的脫氫酶還原為具有高度水溶性的橙黃色甲瓚產物(formazan)。細胞增殖越多越快,顏色越深;細胞毒性越大,則顏色越淺,對于同樣的細胞,顏色的深淺與活細胞的數量成正比,因此可利用這一特性直接進行細胞增殖和毒性分析。懸浮細胞和貼壁細胞均可以進行檢測。
        實驗流程:
        2.1、使用血球計數板對細胞計數計數,接種3000-5000個細胞至96孔板,輕輕搖晃均勻后放入培養箱培養過夜;
        2.2、根據實驗目的進行加藥或其他處理;
        2.3、細胞培養到指定時間點后,加入10&mu;l CCK8溶液,輕輕混勻后放入培養箱中培養2-4h;
        2.4、將96孔板放入酶標儀檢測。
        3 BrdU染色檢測
        BrdU(5-溴脫氧尿嘧啶核苷)是胸腺嘧啶的衍生物,常用于標記活性中新合成的DNA,可代替胸腺嘧啶選擇性整合到復制細胞中新合成的DNA中(細胞周期S期)。隨著DNA復制可以可以進入子細胞中,BrdU特異性抗體可以用于檢測BrdU的摻入,從而判斷細胞的增殖能力。
        EdU和BrdU類似,另一種胸腺嘧啶核苷類似物。它也能夠在細胞增殖時期代替胸腺嘧啶(T)滲入正在復制的DNA分子,通過基于EdU與Apollo熒光染料的特異性反應檢測DNA復制活性,通過檢測EdU標記便能準確地反映細胞的增殖情況。具體操作和BrdU類似。
        實驗流程:
        3.1、接種5&times;105個細胞于玻璃底培養皿中,搖晃均勻后放入培養箱培養過夜,根據實驗目的加入藥物或其他處理。
        3.2、制備適量50&mu;M BrdU培養基,37℃,孵育2h。除去培養液,用PBS洗滌3次。
        3.3、加入4%多聚甲醛常溫固定10min。
        3.4、將多聚甲醛去除,加入預冷的PBS洗3次,每次5min。
        3.5、加入含0.5% Triton X-100的PBS,在冰上將細胞膜穿刺10min。
        3.6、去除PBS-Triton,加入預冷的PBS洗3次,每次5min。
        3.7、加入PBS-3%BSA,常溫封閉30min。
        3.8、將BrdU抗體按照1:100的比例稀釋在PBS-1%BSA溶液中,去除封閉液后,加入一抗,室溫孵育2h或者4℃孵育過夜。
        3.9、去除一抗,加入PBS-0.35%Tween20,洗3次,每次5min。
        3.10、將熒光二抗分別按照1:400比例稀釋在PBS-1%BSA溶液中,去除PBS-T后,加入二抗,室溫避光孵育1h。
        3.11、去除二抗,加入PBS-0.35%Tween20,洗3次,每次5min。
        3.12、加入100ng/mL DAPI溶液,室溫避光孵育10min。
        3.13、去除DAPI,加入PBS-0.35%Tween20,洗3次,每次5min。
        3.14、加入防熒光淬滅溶液,4℃避光放置或直接在激光共聚焦顯微鏡拍照。
        4 細胞克隆形成實驗
        細胞克隆形成實驗是檢測單個細胞增殖能力的實驗方法。當一個細胞在體外增殖6代以上,其后代所組成的細胞群體,形成克隆,每個克隆含有50以上的細胞,大小在0.2-1mm之間,集落的大小和數量反應該細胞獨立生存能力和增殖能力,從而該實驗反應細胞增殖的情況。
        實驗流程:
        4.1、接種500個細胞于六孔板中,輕輕混勻后放入培養箱中培養;
        4.2、培養過夜后,根據實驗目的加入藥物或其他處理;
        4.3、每隔3天更換一次培養基,培養2周后,去除培養基,加入PBS洗一次;
        4.4、加入4%多聚甲醛或者乙醇固定10min,去除培養基,加入結晶紫染色液,常溫染色20min;
        4.5、加入PBS洗3次,將六孔板放入烘箱中烘干,對克隆進行計數和拍照。
         

        圖 細胞增殖能力實驗檢測
        A MTT和CCK8檢測圖; B BrdU染色檢測圖及統計圖; C 細胞克隆形成檢測圖及統計圖

         

         

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